Билет №16.
1) Особенности противовирусного иммунитета
*Основные факторы защиты – специфические АТ, Т-киллеры, ЕК, интерферон и
сывороточ-ные ингибиторы вирусных частиц;
*АТ взаимодействуют только с внеклеточным вирусом, с вирусными белками и
нуклеино-выми кислотами в межклеточной среде;
*Напряженность иммунитета оценивают по нарастанию титра специфических АТ в
парных сыворотках в процессе болезни, иногда определяют концентрацию интерферона
в сыворотке крови.
Особенности противогрибкового иммунитета
*Основные факторы защиты – активированные макрофаги, осуществляющие
антителозави-симую клеточно-опосредованную цитотоксичность грибных клеток;
*АГ грибов практически не индуцируют антителообразование, но стимулируют
клеточное звено иммунитета;
*Происходит аллергизация организма (ГЗТ сопровождают кожные и глубокие микозы,
ГНТ – микозы слизистых дыхательные и мочеполовых путей);
*Напряженность иммунитета оценивают по результатам кожно-аллергических проб.
Особенности противоопухолевого иммунитета
Раковые клетки низкоиммуногенны, выделяют иммуносупрессивные вещества
(«негативные» цитокины), в месте онкогенеза отсутствует воспалительная реакция;
Основные факторы защиты – активированные макрофаги и ЕК;
Роль гуморального иммунитета спорна – специфические АТ могут экранировать АГ
раковых клеток, не вызывая их цитолиза;
Иммунодиагностика рака основана на определении в сыворотке крови
раковоэмбриональных и опухольассоциированных АГ
Особенности трансплантационного иммунитета
*Обусловлен факторами клеточного и гуморального иммунитета, основной фактор – Т-
киллеры, осуществляющие антителонезависимую клеточно-опосредованную цитотоксич-
ность;
*Важную роль играют специфические АТ, запускающие антитело-опосредованный
цитолиз трансплантата;
*В процессе реакции отторжения трансплантата формируется клон Т- и В-клеток
иммунной памяти и при повторной пересадке происходит бурный и быстрый иммунный
ответ, заканчи-вающийся отторжением трансплантата.
*Иммунное отторжение пересаженных тканей протекает в две фазы:
*Вокруг трансплантата скапливаются иммунокомпетентные клетки (лимфоидная
инфильтра-ция);
*Деструкция клеток трансплантата Т-киллерами; активация макрофагов, ЕК и
антителоге-неза иммунное воспаление, тромбоз сосудов нарушение
питания и гибель транспланта-та.
2). Применен бак-скопия, выбраны не правильно среды, температура.
Возбудителями раневой анаэробной инфекции являются бактерии рода Clostridium . К
дан-ному роду относятся Cl. perfringens, Cl. novyi, Cl. septicum, Cl. sordellii,
Cl. histolyticum. Чаще других возбудителем является Cl. perfringens. Заражение
происходит при попадании в рану почвы или пыли, загрязненной спорами клостридий.
В анаэробных условиях (в глубине раны) они прорастают в вегетативные клетки,
продуцирующие разнообразные токсины, которые вызывают распад и некротизацию
мышечной ткани. В этом процессе участвуют стафи-лококки, синегнойная палочка,
протей и другие бактерии, в значительной мере осложняющие течение заболевания.
Бактериоскопическое исследование. Проводится путем микроскопии мазков,
приготовлен-ных из отечной жидкости или некротизированной ткани. Наличие в
препаратах крупных (1—1,5X3—10 мкм) грамположительных палочек ,часть из которых
(CI. perfringens) образует капсулу , позволяет поставить предварительный
диагноз.
Бактериологическое исследование. Исследуемый материал вносят в несколько
пробирок со средой Китта—Тароцци, железосульфитным агаром (среда Вильсона—Блера)
и молоком. Часть пробирок прогревают при 80° С в течение 30 мин для уничтожения
неспорообразующих бактерий. Посевы инкубируют в обычном термостате при 37°С. CI.
perfringens растет в глубине среды. В молоке уже через 3—4 ч после посева
образуется губкообразный сгусток, содержащий пузырьки газа и отделившуюся
прозрачную жидкость. На следующие сутки на среде Китта—Тароцци отмечается
помутнение и газообразование, а на ЖСА несколько позднее появляются черные
колонии в глубине агарового столбика. Для получения культур других видов
клостридий требуются более строгие анаэробные условия. Из всех посевов делают
мазки, окрашивают по Граму и микроскопируют. При положительном результате
обнаруживают крупные грамп(+) палочки CL perfringens. Для получения чистой
культуры делают пересевы на сахарный кровяной агар в чашки Петри, которые
инкубируют в строго анаэробных условиях при 37°С в течение 3—4 дней. Выросшие
колонии пересевают в пробирки со средой Китта—Тароцци. Идентификацию чистой
культуры производят на основании признаков, перечисленных .
3.)Диагностикум клещевого энцефалита сухой для РТГА, РСК, РРГ
набор диагностический многокомпонентный /упаковки комбинированные/ /в комплекте
с ти-поспецифической и нормальной сывороткой, буферными растворами, раствором
Альсевера, каолином/ Для Диагностики клещевого энцефалита .